Introdução - O kiwizeiro pode ser propagado por método sexual (sementes) ou assexual (estaquia, alporquia, enxertia ou micropropagação). As plantas obtidas de sementes são, em sua maioria (até 80 %), masculinas. Além disso, a variabilidade de plantas obtidas por sementes, devido à segregação genética, inviabiliza a obtenção de clones, não recomendando-se o plantio das mesmas para obtenção da planta produtora. No sul do Brasil, normalmente a variedade produtora (copa) é enxertada sobre o porta-enxerto, o qual costuma ser propagado de forma sexuada (Saquet; Brackmann, 1995; Souza et al., 1996).        

Existem dois importantes métodos de propagação para a produção em larga escala de mudas de qualidade, que garantem a preservação das características da planta mãe de geração a geração: estaquia e micropropagação. Entretanto, a estaquia só é viável em uma época restrita do ano, sendo necessário o uso da micropropagação no restante do tempo.

Os patógenos do sistema vascular são graves ameaças aos plantios comerciais de kiwi no Sul do Brasil, sendo Ceratocystis fimbriata (Ell. & Halst.) responsável pelo extermínio anual de 15 % dos plantios na Serra do Nordeste do estado do Rio Grande do Sul (Silveira et al., 2012; Soares, 2017). A micropropagação permite gerar e manter matrizes isentas de patógenos, assegurando o fornecimento de mudas sadias aos agricultores.

Para micropropagar kiwizeiros com sucesso, é de suma importância dispor de protocolos validados nas condições brasileiras. Um protocolo de micropropagação foi ajustado, testando-se recipientes e substratos disponíveis no Brasil para promover a simultaneidade das etapas de enraizamento e aclimatização de mudas de kiwizeiro das espécies Actinidia arguta ((A. Chev.) E.F. Liang & A.R. Ferguson), Actinidia deliciosa ((A. Chev.) E.F. Liang & A.R. Ferguson) e Actinidia chinensis (Planch.). Esta tecnologia pode ser consultada na Circular Técnica número 150, publicada em julho de 2020, da Embrapa Uva e Vinho, que pode ser acessada no sítio <https://www.embrapa.br/en/busca-de-publicacoes/-/publicacao/1123819/micropropagacao-de-kiwizeiros-actinidia-arguta-actinidia-deliciosa-e-actinidia-chinensis>.

Etapas da micropropagação - A micropropagação envolve quatro etapas: indução de explantes iniciais, multiplicação de brotações, enraizamento de brotações e aclimatização ex vitro da muda (Grattaplaglia e Machado, 1998). Destas, a etapa de enraizamento é a mais problemática para o kiwi, pois as raízes formadas in vitro não são funcionais (Pedroso et al., 1992). O enraizamento ex vitro foi demonstrado viável e vantajoso para micropropagação comercial de várias espécies, como teca (Fermino Jr. et al., 2011), carvalho-vermelho (Meier-Dinkel et al., 1993), macieira (Pedrotti & Voltolini, 2001), amoreira-preta (Pelizza et al., 2013), eucalipto (Xavier & Comério, 1996) e ornamentais (Debergh & Maene, 1981), tornando o processo menos oneroso e mais eficiente.

• A viabilidade do enraizamento de brotações geradas in vitro em substrato foi demonstrada para batata por Rigato et al. (2001) e ajustada para kiwi conforme citação em Rigato (2006), motivando a execução do trabalho apresentado na Circular Técnica número 150, que permite desonerar e abreviar com sucesso o protocolo de produção comercial de mudas de kiwizeiro no Brasil.
• O enraizamento de brotos micropropagados é uma etapa realizada classicamente in vitro (Álvares et al., 1989; Harbage & Stimart, 1996; De Klerk et al., 1997). O enraizamento ex vitro diretamente na aclimatização em substrato reduz custos e mão-de-obra na propagação de mudas (Augusto et al., 2006), ocorrendo formação de novas raízes em substratos porosos, com condições físicas e nutricionais adequadas (Pedrotti & Voltolini, 2001). Como estratégias adaptativas, as plantas aclimatizadas devem desenvolver mecanismos de controle da transpiração e condutância estomática (Diaz-Perez et al., 1995; Pospisilová et al., 1999), ativar os mecanismos de controle de perda de água pelas células (Sutter, 1988) e aumentar a taxa fotossintética (Van Telgen et al., 1992).

Referências: ÁLVAREZ, R.; NISSE, S. J.; SUTTER, E. G. Relationship between indole-3acetic acid levels in Apple (Malus pumila Mill.) rootstocks cultured in vitro and adventitious root formation in presence of indole-3-butyric acid. Plant Physiology, Minneapolis, v. 89, n. 2, p. 439-443, 1989. AUGUSTO, C. S. S.; BIASI, L. A.; TELLES, C. A. Enraizamento e aclimatização de plantas micropropagadas de amoreira-preta cv. Brazos. Revista Brasileira de Fruticultura, Jabotocabal,  v. 28, n. 3, p. 473-476, 2006. DE KLERK, G. J.; BRUGGE, J. T.; MARINOVA, S. Effectiveness of indoleacetic acid, indolebutyric acid and naphthalenacetic acid during adventitious root formation in vitro in Malus 'Jork 9'. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, Amsterdam, v. 49, n. 1, p. 39-44, 1997. DEBERGH, P. C.; MAENE, L. J. A scheme for commercial propagation of ornamental plants by tissue culture. Scientia Horticulturae, v. 14, n. 4, p. 335-345, april 1981. Doi: 10.1016/0304-4238 (81)90047-9. DIAZ-PÉREZ, J. C.; SUTTER, E. G.; SHACKEL, K. A. Acclimatization and subsequent gas exchange, water relations, survival and growth of microcultured apple plantlets after transplanting them in soil. Physiologia Plantarum, v. 95, n. 2, p. 225-232, 1995. Doi: 10.1111/j.1399-3054.1995.tb00831.x.

FERMINO JUNIOR, P. C. P.; RAPOSO, A.; PEREIRA, J. E. S. Enraizamento ex vitro e aclimatização de plantas micropropagadas de Tectona grandis. Floresta, Curitiba, PR, v. 41, n. 1, p. 79-86, jan./mar. 2011. GRATTAPAGLIA, D.; MACHADO, M. A. Micropropagação. In: TORRES, A. C.; CALDAS, L. S.; BUSO, J. A. (Ed.) Cultura de tecidos e transformação genética de plantas. Brasília, DF: Embrapa-SPI: Embrapa-CNPH, 1998. v. 1, p. 183-260. HARBAGE, J. F.; STIMART, D. P. Effect of pH and 1H-indole-3-butyric acid (IBA) on rooting of apple microcuttings. Journal of the American Society for Horticultural Science, Alexandria, v. 121, n. 6, p. 1049-1053, 1996.

MEIER-DINKEL, A.; BECKER, B.; DUCKSTEIN, D. Micropropagation and ex vitro rooting of several clones of late-flushing Quercus robur L. Annals of Forerst Science, v. 50, (Suppl), p. 319s-322s, 1993. Doi: 10.1051/forest:19930733. PEDROSO, M. C.; OLIVEIRA, M. M.; PAIS, M. S. S. Micropropagation and simultaneous rooting of Actinidia deliciosa var. deliciosa 'Hayward'. HortScience, v. 27, n. 5, p. 443-445, 1992. PEDROTTI, E. L.; VOLTOLINI, J. A. Enraizamento ex vitro e aclimatização do porta-enxerto de macieira M.9. Revista BrasIleira de Fruticultura, Jaboticabal, v. 23, n. 2, p. 234-239, agosto 2001. Doi: 10.1590/S0100-29452001000200006. PELIZZA, T. R.; MUNIZ, J.; CAMARGO, P.; KRETZSCHMAR, A. A.; RUFATO, L. Enraizamento ex vitro e aclimatização de plântulas micropropagadas de amoreira-preta 'Xavante' Revista Brasileira de Fruticulura, Jaboticabal, v. 35, n. 1, p. 333 - 337, Março 2013. Doi: 10.1590/S0100-29452013000100039. POSPÍ?ILOVÁ, J.; TICHÁ, I.; KADLE?EK, P.; HAISEL, D.; PLZÁKOVÁ, ?. Acclimatization of micropropagated plants to ex vitro conditions. Biologia Plantarum, v. 42, n. 4, p. 481-497, 1999.  RIGATO, S. Desarrollan una nueva tecnología para producir plantas de kiwi. Informe Frutihortícola, n. 258, p. 8, dic. 2006. RIGATO, S.; GONZÁLES, A.; HUARTE, M. A. Producción de plântulas de papa a partir de técnicas combinadas de micropropagación e hidroponía para la obtención de semilla prebasica. Revista Latinoamericana de la Papa, v. 12, p. 110-120, 2001. SAQUET, A. A.; BRACKMANN, A. A cultura do kiwi. Ciência Rural, Santa Maria, v. 25, n.1, p.177-182, 1995. SILVEIRA, S. V. da; ANZANELLO, R.; SIMONETTO, P. R.; GAVA, R.; GARRIDO, L. da R.; SANTOS, R. S. dos S.; GIRARDI, C. L. Aspectos técnicos da produção de kiwi. Bento Gonçalves: Embrapa Uva e Vinho, 2012. 82 p. (Embrapa Uva e Vinho. Documentos, 79). SOARES, F. Farroupilha perde título de capital nacional do kiwi por causa de fungo. Jornal Zero Hora, Porto Alegre, 7 jul. 2017. Disponível em: <https://gauchazh.clicrbs.com.br/economia/campo-e-lavoura/noticia/2017/07/farroupilha-perde-titulo-de-capital-nacional-do-kiwi-por-causa-de-fungo-9835579.html>. Acesso em 07 jul. 2017. SOUZA, P. V. D. de; MARODIN, G. A. B. M.; BARRADAS, C. I. N. Cultura do quivi. Porto Alegre: Cinco Continentes, 1996. 104 p. SUTTER, E. Stomatal and cuticular water loss from apple, cherry and sweetgum plants after removal from in vitro culture. Journal of American Society for Horticultural Science, Alexandria, v. 113, n. 2, p. 234-238, 1988. VAN TELGEN, H. J.; VAN MIL, A.; KUNNEMAN, B. Effect of propagation and rooting conditions on acclimatization of micropropagated plants. Acta Botanica Neerlandica, v. 41, n. 4, p. 453-459, 1992. Doi: 10.1111/j.1438-8677.1992.tb00515.x. XAVIER, A.; COMÉRIO, J. Microestaquia: uma maximização da micropropagação de Eucalyptus. Revista Árvore, v. 20, p. 9-16, 1996.

Samar Velho da Silveira[1], Lia Rosane Rodrigues[2], Flavio Bello Fialho^{1 -} [1]Embrapa Uva e Vinho, Caixa Postal 130, CEP 95701-008, Bento Gonçalves, RS. E?mail:[email protected], [email protected]; [1]Departamento de Diagnóstico e Pesquisa Agropecuária da Secretaria da Agricultura, Pecuária e Desenvolvimento Rural do Rio Grande do Sul, Brasil. E-mail: [email protected]